scholarly journals Estudio de proteínas solubles que unen lípidos (SLBP) intracelulares expresadas en sistemas que metabolizan grandes cantidades de lípidos

2009 ◽  
Author(s):  
◽  
Lisandro J. Falomir Lockhart

Los lípidos son compuestos que cumplen una gran variedad de funciones en la biología celular, desde componentes estructurales o nutrientes de reserva hasta señales hormonales o incluso feromonas pasando por moduladores de la transcripción y pigmentos fotosintéticos. Sin embargo, por definición, estos compuestos poseen una muy baja solubilidad en el medio acuoso celular. Por tal motivo, se cree que han evolucionado diferentes familias de proteínas solubles, capaces de unir lípidos en forma reversible en el citosol, las SLBP (Soluble Lipid Binding Proteins) intracelulares. Dentro de este conjunto de proteínas, las familias mejor caracterizadas corresponden a las proteínas que unen ácidos grasos (FABP) y las proteínas transportadoras de esteroles (SCP-2), ambas con capacidad de unir ácidos grasos de cadena larga. Cada familia de proteínas SLBP posee varias isoformas que presentan un patrón de expresión y especificidad de unión de ligando hidrofóbicos únicos. Se cree que estas diferencias residen en una baja identidad de secuencia (tan sólo un 20%), a pesar de la cual adoptan estructuras tridimensionales prácticamente superponibles. A fin de contribuir en la identificación determinantes estructurales críticos y las funciones específicas de las SLBP se estudiaron tres proteínas modelo que participan de tipos celulares que muestran una capacidad de metabolismo lipídico extraordinario, como son las células de enterocito intestinal de mamífero y las levaduras Yarrowia lipolytica. En el primer caso se coexpresan dos FABP en niveles prácticamente equivalentes. Por un lado se analizó in vitro el rol de residuos de Lys específicos de la IFABP en la transferencia de ácidos grasos, siendo estos importantes para el sensado de las características de las membranas aceptoras. Ensayos de interacción con membrana revelaron que tanto IFABP como LFABP muestran moduladores distintos de su interacción con bicapas fosfolipídicas, y que en particular las regiones α-helicoidal serían críticas para este fenómeno. Asimismo, se demostró la transferencia in vitro de ligandos entre ambas FABP intestinales. Finalmente, se comprobó que la expresión de LFABP en células Caco-2 en cultivo afecta la asimilación de ácidos grasos, así como su distribución a tiempos cortos. El análisis comparativo de estas proteínas parece indicar que cumplirían funciones diferentes dentro del entorno celular. En el caso de Y. lipolytica, sólo una SLBP es expresada con capacidad de unir ácidos grasos libres, representante de la familia de las SCP-2, YLSCP2. El análisis in vitro de sus capacidades de unión y de transferencia de ligandos hacia membranas aceptoras en distintas condiciones demostró que la YLSCP2 podría cumplir un rol de transporte de ligando hidrofóbicos hacia estructuras intracelulares específicas. En conclusión, estas proteínas no sólo son capaces de actuar como buffer citosólico de lípidos aumentando así su disponibilidad para los distintos procesos celulares, sino que también son capaces de modular o regular su metabolismo. Más estudios son necesarios para poder comprender mejor las funciones específicas de estas SLBP, pero los secretos que esconden sus estructuras podrían tener importantes aplicaciones en áreas diversas como medicina, nutrición, industria biotecnológica y el tratamiento de efluentes industriales.

1986 ◽  
Vol 238 (3) ◽  
pp. 879-884 ◽  
Author(s):  
B Lidström-Olsson ◽  
K Wikvall

The ability of different lipid-binding proteins in liver cytosol to affect enzyme activities in bile-acid biosynthesis was studied in whole microsomes (microsomal fractions) and mitochondria and in purified enzyme systems. Sterol carrier protein2 stimulated the 7 alpha-hydroxylation of cholesterol and the 12 alpha-hydroxylation of 5 beta-cholestane-3 alpha, 7 alpha-diol in microsomes and the 26-hydroxylation of cholesterol in mitochondria 2-3-fold. It also stimulated the oxidation of 5-cholestene-3 beta, 7 alpha-diol into 7 alpha-hydroxy-4-cholesten-3-one in microsomes. The stimulatory effect of sterol carrier protein2 was much less with purified cholesterol 7 alpha- and 26-hydroxylase systems than with microsomes and mitochondria. No stimulatory effect of sterol carrier protein2 was observed with purified 12 alpha-hydroxylase and 3 beta-hydroxy-delta 5-C27-steroid oxidoreductase. Sterol carrier protein (fatty-acid-binding protein), ‘DEAE-peak I protein’ [Dempsey, McCoy, Baker, Dimitriadou-Vafiadou, Lorsbach & Howards (1981) J. Biol. Chem. 256, 1867-1873], ligandin (glutathione transferase B) and serum albumin had no marked stimulatory effects in either crude or in purified systems. The results suggest that sterol carrier protein2 facilitates the introduction of the less-polar substrates in bile-acid biosynthesis to the membrane-bound enzymes in crude systems in vitro. The broad substrate specificity appears, however, not to be consistent with a specific regulatory function for sterol carrier protein2 in bile-acid biosynthesis.


2014 ◽  
Vol 1844 (7) ◽  
pp. 1268-1278 ◽  
Author(s):  
Laura Ragona ◽  
Katiuscia Pagano ◽  
Simona Tomaselli ◽  
Filippo Favretto ◽  
Alberto Ceccon ◽  
...  

1997 ◽  
Vol 17 (1) ◽  
pp. 277-303 ◽  
Author(s):  
David A. Bernlohr ◽  
Melanie A. Simpson ◽  
Ann Vogel Hertzel ◽  
Leonard J. Banaszak

2014 ◽  
Vol 34 (suppl_1) ◽  
Author(s):  
Hong Choi ◽  
Isabelle Ruel ◽  
Rui Hao Leo Wang ◽  
Jacques Genest

High-density lipoprotein (HDL) particles, generated in the process of removing excess cellular cholesterol, play crucial roles in maintaining cholesterol homeostasis in arterial cells and in protecting the cardiovascular system from the development of atherosclerosis. Cholesterol-loaded cells increase their binding capacity to the HDL scaffolding protein, apolipoprotein A-I (ApoA-I), however, cell surface factors necessary for ApoA-I binding remains to be elucidated. To characterize cell membrane microdomains interacting with ApoA-I, primary human skin fibroblasts were incubated with ApoA-I for 1h at 4°C. After linking protein-protein interactions with a membrane-impermeable crosslinker, DTSSP, cells were subjected to homogenization. The cell homogenate was separated by a discontinuous sucrose gradient centrifugation and ten fractions were collected. ApoA-I-associated cell membrane fraction was located by immunoblotting for ApoA-I and organelle markers. Membrane-containing fractions were fragmented using sonication prior to immunoprecipitation of ApoA-I-associated microdomains using an anti-ApoA-I antibody. Major lipid classes present in the microdomains are phosphatidylcholine, phosphatidylserine, sphingomyelin and cholesterol. Two cell membrane proteins, caveolin and ABCA1, were excluded from the microdomains. These data suggest that ApoA-I bind to cholesterol-rich cell surface microdomains that are different from ABCA1 and caveolae domains. LC-MS/MS analysis identified the presence of 26 proteins in the microdomains. Among these, several desmosomal proteins, lipid binding proteins and protease inhibitors were identified. Overall, our results suggest that the initial binding of ApoA-I to cell surface occurs on the lateral sides of cell membranes where desmosomal proteins provide a binding site for ApoA-I, and that lipid binding proteins facilitate lipidation of ApoA-I while protease inhibitors protect ApoA-I and related proteins from degradation. In conclusion, we established a new method to isolate cell membrane microdomains interacting with ApoA-I. Using this method, we found that ApoA-I associates with desmosomal proteins for the formation of HDL.


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