scholarly journals Revolutionizing male fertility factor research in mice by using the genome editing tool CRISPR/Cas9

2017 ◽  
Vol 17 (1) ◽  
pp. 3-10 ◽  
Author(s):  
Ferheen Abbasi ◽  
Haruhiko Miyata ◽  
Masahito Ikawa
Science ◽  
2003 ◽  
Vol 300 (5623) ◽  
pp. 1197g-1197

Plants ◽  
2020 ◽  
Vol 9 (3) ◽  
pp. 369 ◽  
Author(s):  
Nicholas A. Boerman ◽  
Ursula K. Frei ◽  
Thomas Lübberstedt

Doubled haploid (DH) technology has changed the maize-breeding landscape in recent years. Traditionally, DH production requires the use of chemical doubling agents to induce haploid genome doubling and, subsequently, male fertility. These chemicals can be harmful to humans and the plants themselves, and typically result in a doubling rate of 10%–30%. Spontaneous genome doubling and male fertility of maize haploids, without using chemical doubling agents, have been observed to a limited extent, for nearly 70 years. Rates of spontaneous haploid genome doubling (SHGD) have ranged from less than 5% to greater than 50%. Recently, there has been increased interest to forgo chemical treatment and instead utilize this natural method of doubling. Genetic-mapping studies comprising worldwide germplasm have been conducted. Of particular interest has been the detection of large-effect quantitative trait loci (QTL) affecting SHGD. Having a single large-effect QTL with an additive nature provides flexibility for the method of introgression, such as marker-assisted backcrossing, marker-assisted gene pyramiding, and systematic design. Moreover, it allows implementation of new methodologies, such as haploid-inducer mediated genome editing (HI-edit) and promotion of alleles by genome editing. We believe the use of SHGD can further enhance the impact of DH technology in maize.


2015 ◽  
Author(s):  
Ευθυμία Σαγρή

Το έντομο Bactrocera oleae (Tephritidae), κοινώς ο δάκος της ελιάς, είναι ο σημαντικότερος εχθρός της ελιάς και η ζημιά που προκαλεί φτάνει το 30% ετησίως. Οι καταστροφικές του συνέπειες τον καθιστούν στόχο συστηματικού ελέγχου, κυρίως με χρήση χημικών εντομοκτόνων. Για την καταπολέμηση του εντόμου στη χώρα μας χρησιμοποιούνται κυρίως οργανοφωσφορικά εντομοκτόνα, ενώ σε μικρότερη κλίμακα εφαρμόζονται οι συνθετικές πυρεθρίνες και πρόσφατα ο νατουραλίτης spinosad. Η μη ορθολογική χρήση αυτών εμπεριέχει κινδύνους, όπως οικολογικές διαταραχές, δημιουργία και εξάπλωση ανθεκτικότητας, επιβλαβείς τοξικολογικές επιδράσεις και συνέπειες στην υγεία του ανθρώπου. Για τον έλεγχο φυσικών πληθυσμών του εντόμου έχουν προταθεί νέες φιλικότερες προς το περιβάλλον μέθοδοι, όπως η τεχνική του στείρου εντόμου (Sterile Insect Technique, SIT) που προϋποθέτει τη μαζική εκτροφή και εξαπόλυση στείρων εντόμων στη φύση. Η μέθοδος αυτή έχει χρησιμοποιηθεί με επιτυχία για τον έλεγχο άλλων εντόμων (πχ. Μεσογειακή μύγα) σε διάφορες περιοχές του κόσμου, ωστόσο η SIT δεν έχει εφαρμοσθεί με επιτυχία ακόμη στον δάκο. Όπως έχει δειχθεί σε πολλές περιπτώσεις, η επιτυχής εφαρμογή της SIT προϋποθέτει καλή γνώση της βιολογίας και της οικολογίας του εντόμου, καθώς και αποτελεσματικά μοριακά και γενετικά εργαλεία. Δεδομένου ότι οι πληροφορίες για το γονιδίωμα του δάκου είναι ελάχιστες, η παρούσα έρευνα έχει σκοπό την ανάπτυξη εργαλείων πρωτεομικής και τρανσκριπτομικής που θα βοηθήσουν τις προσπάθειες αποτελεσματικότερης εφαρμογής SIT και τον εντοπισμό και την απομόνωση γονιδίων του δάκου που εμπλέκονται είτε σε μονοπάτια φυλοδιαχωρισμού είτε ανθεκτικότητας στο εντομοκτόνο spinosad. Τρανσκριπτομική ανάλυση: Η ανάλυση του τρανσκριπτώματος του δάκου στόχευε αφενός στην αποκάλυψη γενετικών τόπων που εμπλέκονται στην ανθεκτικότητα του δάκου στο spinosad και αφετέρου στον εντοπισμό γονιδίων διαχωρισμού των δύο φύλων. Για το σκοπό αυτό, RNA απομονώθηκε είτε από κεφάλια ανθεκτικών και ευαίσθητων στο spinosad εντόμων, είτε από το αναπαραγωγικό σύστημα αρσενικών και θηλυκών ατόμων. Το RNA αυτό μετατράπηκε σε cDNA και ακολούθησε η αλληλούχησή του. Η αλληλούχηση πραγματοποιήθηκε στο Ινστιτούτο Φλέμινγκ με την τεχνολογία SOLiD. Η βιοπληροφορική ανάλυση των δειγμάτων κατέληξε σε πλήθος γονιδίων διαφορετικής έκφρασης σε ευαίσθητα και ανθεκτικά στο spinosad έντομα καθώς επίσης και σε αρσενικά και θηλυκά άτομα B. oleae. Η επεξεργασία και σύγκριση περισσότερων από 13.000 γονιδίων προσδιόρισε τη στατιστικά σημαντική υπερέκφραση 9 γονιδίων και στατιστικά σημαντική υποέκφραση ~40 γονιδίων ανάμεσα σε ευαίσθητα και ανθεκτικά στο spinosad έντομα. Αντίστοιχα, 330 γονίδια είχαν υπερέκφραση στα θηλυκά έντομα ενώ 1238 υπερεκφράζονται στα αρσενικά έντομα. Στη συνέχεια επιλέχθηκαν είτε γονίδια με ιδιαίτερα διαφορετική έκφραση είτε γονίδια ιδιαίτερου ενδιαφέροντος για περαιτέρω λειτουργική ανάλυση μέσω qRT-PCR. Για τη λειτουργική ανάλυση διαφορικά εκφραζόμενων γονιδίων σε θηλυκά και αρσενικά άτομα μελετήθηκαν οι δώδεκα γενετικοί τόποι: kl2 (male fertility factor, kl2), kl3 (male fertility factor, kl3), kl5 (male fertility factor, kl5), ory (occludin-related Y protein), fem-1 (sex-determining protein fem-1), gas8 (growth arrest specific protein 8), lobo (lost boys),ix (intersex), pbl (pebble) και hcf (host cell factor C1) που υπερεκφράζονται στα αρσενικά και τα δύο γονίδια sox και pcp (pupal cuticle protein 78E) που υπερεκφράζονται στα θηλυκά έντομα. Στα αποτελέσματα που προέκυψαν επιβεβαιώθηκε σημαντική διαφορά αυξημένης έκφρασης στα αρσενικά έντομα για τα γονίδια kl2, kl3, kl5, ory, fem-1, gas8, lobo, pbl, hcf και το γονίδιο pcp με υπερέκφραση στα θηλυκά έντομα ενώ ελάχιστες διαφορές παρατηρήθηκαν μεταξύ των αρσενικών και θηλυκών εντόμων για το γονίδιο ix. Μόνο για το γονίδιο sox δεν διαπιστώθηκε το αναμενόμενο αποτέλεσμα. Παράλληλα, για τη λειτουργική ανάλυση των γονιδίων που εμπλέκονται στην ανθεκτικότητα, συνολικά μελετήθηκαν δύο ανθεκτικοί και δύο ευαίσθητοι πληθυσμοί B. oleae. Οι ανθεκτικοί πληθυσμοί ήταν ο εργαστηριακός πληθυσμός (SPIN) που είχε επιλεγεί μέσω συνεχούς προσθήκης του εντομοκτόνου στη διατροφή του και ένας φυσικός πληθυσμός από την Καλιφόρνια (w-CAL) που εμφάνιζε 13 φορές αυξημένη ανθεκτικότητα σε σχέση με εργαστηριακό ευαίσθητο στέλεχος. Οι ευαίσθητοι πληθυσμοί ήταν ο εργαστηριακός (LΑΒ) που εκτρέφεται σε εργαστηριακές συνθήκες τα τελευταία ~40 χρόνια και ένας πληθυσμός που προέκυψε από ελαιόκαρπους της περιοχής Βόλου- Αγριάς (w-GR) όπου δεν γίνεται χρήση εντομοκτόνων. Συνολικά μελετήθηκαν οι δεκαέξι γενετικοί τόποι που αρκετοί ανήκουν σε ομάδες μεταβολισμού ενέργειας: Yolk protein 2 (Yp2), ATP synthase FO subunit 6 (ATP synthase), Low affinity cationic amino acid transporter 2 (CAT-2), Serine protease 6 (SP6), 4-nitrophenylphophatase (pNPPase), Salivary Cys-rich secreted peptide-vWF (SalCys), Cytochrome P450 6a23-like (Cyp6α23) και Antigen 5 precursor (Ant5) που υπερεκφράζονται στα ανθεκτικά στο spinosad έντομα και Heat-shock protein 70 (Hsp70), Heat-shock protein 23 (Hsp23), Larval serum protein 1 (LSP1), HexamerinL1 (HexL1), Chitinase 5 (Cht5), Oxidase/peroxidase (oxidase), Macrophage mannose receptor 1 (mmr1) και Cell division cycle-associated protein 7 (Cdc) που υποεκφράζονται στα ανθεκτικά έντομα. Στα αποτελέσματα που προέκυψαν επιβεβαιώθηκε σημαντική διαφορά αυξημένης έκφρασης στα ανθεκτικά έντομα για τα γονίδια Yp2, ATPsynthase, CAT-2, SP6, pNPPase, SalCys και Cyp6α23 αλλά και των γονιδίων Hsp70, Hsp23, LSP1, HexL1, Cht5 με υπερέκφραση στα ευαίσθητα έντομα. Για τα γονίδια Ant5, oxidase, mmr1 και Cdc δεν διαπιστώθηκε το αναμενόμενο αποτέλεσμα. Πρωτεομική ανάλυση: Για την πρωτεομική ανάλυση, αρχικά πραγματοποιήθηκε ηλεκτροφόρηση δύο διαστάσεων (2D-PAGE) σε κεφάλια από αρσενικά και θηλυκά έντομα για τη μελέτη της διαφορικής έκφρασης των πρωτεϊνών μεταξύ των δύο φύλων του δάκου. Στη συνέχεια, οι διαφορετικές πρωτεΐνες εντοπίστηκαν, αποκόπηκαν, ακολούθησε πέψη με τρυψίνη και ανάλυση με φασματομετρία μάζας στο ινστιτούτο Αλέξανδρος Φλέμινγκ. Τέλος, τα αποτελέσματα επεξεργάστηκαν μέσω βιοπληροφορικής ανάλυσης, όπου προέκυψαν πρωτεΐνες που εκφράζονται με διαφορετικό τρόπο ανάμεσα σε θηλυκά και αρσενικά έντομα. Οι πρωτεΐνες αυτές ανήκουν σε διαφορετικές λειτουργικές ομάδες όπως κυτοσκελετού, μεταβολισμού, συναπτοσωμικές, μεταγωγής σήματος και οξειδωτικού στρες. Επίσης, έγινε εφαρμογή μιας νέας προσέγγισης μέσω μελέτης των πεπτιδίων. Με σκοπό τη διερεύνηση μηχανισμών που εμπλέκονται σε συστήματα φυλοδιαχωρισμού, αρχικά συλλέχθηκαν όργανα αναπαραγωγής αρσενικών και θηλυκών εντόμων από το εργαστηριακό στέλεχος του δάκου. Στη συνέχεια, έγινε ομογενοποίηση των ιστών με κατάλληλο διάλυμα λύσης και απομόνωση των πεπτιδίων. Ακολούθησε η φασματομετρία μάζας με χρήση MALDI TOF-TOF, λήψη των αποτελεσμάτων των πεπτιδίων με τη χρήση του MASCOT και επεξεργασία των αποτελεσμάτων μέσω βιοπληροφορικής ανάλυσης. Με επιτυχία έγινε εντοπισμός πεπτιδίων που εμπλέκονται σε συστήματα διαχωρισμού των δύο φύλων καθώς παρατηρήθηκε υπερέκφραση τους σε αρσενικά και θηλυκά έντομα αντίστοιχα.


PLoS Genetics ◽  
2021 ◽  
Vol 17 (6) ◽  
pp. e1009655
Author(s):  
Li Zhu ◽  
Ryuya Fukunaga

During spermatogenesis, the process in which sperm for fertilization are produced from germline cells, gene expression is spatiotemporally highly regulated. In Drosophila, successful expression of extremely large male fertility factor genes on Y-chromosome spanning some megabases due to their gigantic intron sizes is crucial for spermatogenesis. Expression of such extremely large genes must be challenging, but the molecular mechanism that allows it remains unknown. Here we report that a novel RNA-binding protein Maca, which contains two RNA-recognition motifs, is crucial for this process. maca null mutant male flies exhibited a failure in the spermatid individualization process during spermatogenesis, lacked mature sperm, and were completely sterile, while maca mutant female flies were fully fertile. Proteomics and transcriptome analyses revealed that both protein and mRNA abundance of the gigantic male fertility factor genes kl-2, kl-3, and kl-5 (kl genes) are significantly decreased, where the decreases of kl-2 are particularly dramatic, in maca mutant testes. Splicing of the kl-3 transcripts was also dysregulated in maca mutant testes. All these physiological and molecular phenotypes were rescued by a maca transgene in the maca mutant background. Furthermore, we found that in the control genetic background, Maca is exclusively expressed in spermatocytes in testes and enriched at Y-loop A/C in the nucleus, where the kl-5 primary transcripts are localized. Our data suggest that Maca increases transcription processivity, promotes successful splicing of gigantic introns, and/or protects transcripts from premature degradation, of the kl genes. Our study identified a novel RNA-binding protein Maca that is crucial for successful expression of the gigantic male fertility factor genes, spermatogenesis, and male fertility.


2021 ◽  
Vol 0 (0) ◽  
pp. 0
Author(s):  
Haruhiko Miyata ◽  
Yuki Oyama ◽  
Keisuke Shimada ◽  
Yoshitaka Fujihara ◽  
Keizo Tokuhiro ◽  
...  

2006 ◽  
Vol 149 (2) ◽  
pp. 216-222 ◽  
Author(s):  
Ben C.L. van Schaijk ◽  
Melissa R. van Dijk ◽  
Marga van de Vegte-Bolmer ◽  
Geert-Jan van Gemert ◽  
Maaike W. van Dooren ◽  
...  

Genetics ◽  
2020 ◽  
Vol 215 (3) ◽  
pp. 623-633 ◽  
Author(s):  
Jiaying Zhang ◽  
Junjie Luo ◽  
Jieyan Chen ◽  
Junbiao Dai ◽  
Craig Montell

The Y chromosome of Drosophila melanogaster is pivotal for male fertility. Yet, only 16 protein-coding genes reside on this chromosome. The Y chromosome is comprised primarily of heterochromatic sequences, including DNA repeats and satellite DNA, and most of the Y chromosome is still missing from the genome sequence. Furthermore, the functions of the majority of genes on the Y chromosome remain elusive. Through multiple genetic strategies, six distinct segments on the Y chromosome have been identified as “male fertility factors,” and candidate gene sequences corresponding to each of these loci have been ascribed. In one case, kl-3, a specific protein coding sequence for a fertility factor has been confirmed molecularly. Here, we employed CRISPR/Cas9 to generate mutations, and RNAi, to interrogate the requirements of protein coding sequences on the Y chromosome for male fertility. We show that CRISPR/Cas9-mediated editing of kl-2 and kl-5 causes male sterility, supporting the model that these gene sequences correspond to the cognate fertility factors. We show that another gene, CCY, also functions in male fertility and may be the ks-2 fertility factor. We demonstrate that editing of kl-2, kl-3, and kl-5, and RNAi knockdown of CCY, disrupts nuclear elongation, and leads to defects in sperm individualization, including impairments in the individualization complex (IC) and synchronization. However, CRISPR/Cas9 mediated knockout of some genes on the Y chromosome, such as FDY, Ppr-Y, and Pp1-Y2 do not cause sterility, indicating that not all Y chromosome genes are essential for male fertility.


2017 ◽  
Vol 6 (3) ◽  
pp. 162-162
Author(s):  
Liane Kaufmann ◽  
Michael von Aster
Keyword(s):  

2018 ◽  
Author(s):  
M Keller ◽  
J Dalla-Riva ◽  
A Kurbasic ◽  
M Al-Majdoub ◽  
P Spegel ◽  
...  

Sign in / Sign up

Export Citation Format

Share Document